生物化学与分子生物学/其他实验技术/毕氏酵母(Pichia pastoris)感受态细胞制备及转化
毕氏酵母氯化锂转化法
[编辑]试剂
[编辑]1M LiCl(用去离子蒸馏水配制,滤膜过滤除菌;必要时用消毒去离子水稀释)
50% PEG3350(Sigma P3640 用去离子蒸馏水配制,滤膜过滤除菌,用较紧的盖子的瓶子分装)
2mg/ml salmon sperm DNA / TE(10mM Tris-Cl, pH8.0, 1.0mM EDTA)-20℃保存
注:醋酸锂对毕氏酵母无效,仅氯化锂有效;PEG3350可屏蔽高浓度LiCl的毒害作用;
感受态毕氏酵母的制备
[编辑]接种Pachia pastoris到50ml YPD培养基中,30℃摇菌过夜(约24~28h)培养到OD值为0.8~1.0(约108 Cells/ml);
收获细胞,用25ml无菌水洗涤一次,室温下1500g离心10min;
重悬细胞于1ml 100mM LiCl溶液中,将悬液转入1.5ml离心管;
离心机最大速度离心15秒沉淀菌体,重悬菌体于400ul 100mM LiCl溶液中;
按50ul/管分装,立即进行转化;
注:不要将感受态酵母菌冰浴;
毕氏酵母的转化
[编辑]煮沸1ml鲑鱼精DNA 5min,迅速冰浴以制备单链担体DNA;
将感受态酵母菌离心,以Tips去除残余的LiCl溶液;
对于每一个转化,按以下顺序加入:
50% PEG3350 | 240ul |
1M LiCl | 36ul |
2mg/ml 单链Salmon sperm DNA | 25ul |
5~10ug/50ul H2O 质粒DNA | 50ul |
剧烈旋涡混匀直至沉淀菌体完全分布均匀(约1min);
30℃水浴孵育30min;
42℃水浴热休克20~25min;
6000~8000rpm离心收集酵母菌体;
重悬酵母于1ml YPD培养基,30℃摇床孵育;
1~4h后,取25~100ul菌液铺选择性培养基平板,于30℃培养2~3天鉴定;
毕氏酵母PEG1000转化法
[编辑]试剂
[编辑]缓冲液A:1.0M Sorbitol,10mM Bicine,pH8.35(sigma),3%(v/v)ethylene glycol
缓冲液B:40%(w/v)PEG1000(sigma),0.2M Bicine,pH8.35
缓冲液C:0.15M NaCl,10mM Bicine,pH8.35
未污染的新鲜、试剂级DMSO,-70℃保存
注:
- 缓冲液A、B、C均用滤膜过滤,-20℃保存;
- 将DNA直接加在冻结的酵母细胞上是本实验的关键之处(即使在冰上解冻的待转化细胞,其摄取外源DNA的能力也在解冻过程中迅速下降;如进行多样品的转化,建议按6样品/组进行);
待转化毕氏酵母的制备
[编辑]接种环接种Pachia pastoris于YPD平板,30℃培养2d;
挑取单克隆酵母菌株于10mlYPD培养基中,30℃振荡培养过夜;
取步骤2中小量菌液接种到100mlYPD培养基中振荡培养,待其OD值从0.1升到0.5~0.8;
室温下3000g离心收集酵母菌体,50ml缓冲液A洗涤一次;
重悬菌体于4ml缓冲液A中,按0.2ml/管分装于1.5ml的离心管中,每管加入11ulDMSO,混合后迅速于液氮中冷冻,
-70℃保存
毕氏酵母的转化
[编辑]将约50ug线性化质粒DNA溶于20ul TE或水中,直接加于冻结的酵母细胞中;加入担体DNA(40ug变性超声线性化鲑鱼精DNA)以获得最大转化率;
37℃水浴孵育5min,中间混合样品1~2次;
取出离心管,加入1.5ml缓冲液B,彻底混匀;
30℃水浴孵育1h;
室温下2000g离心10min,去除上清液,菌体沉淀重悬于1.5ml缓冲液C中;
离心样品,去除上清液,轻微操作将样品重悬于0.2ml缓冲液C中;
将所有转化液铺于选择性平板,于30℃孵育3~4天后,鉴定;
毕氏酵母电转化法
[编辑]E.coli TOP10F’感受态细胞的制备
[编辑]取10ul TOP10F’菌液,接种于200ml LB液体培养基中活化培养,37℃,200 rpm,16~18小时。取100ul菌液接种于200ml液体LB培养基中。
37℃,200 rpm,培养16~18小时。
灭菌500 ml离心管,4℃,4000 rpm,20 min。得菌体沉淀。弃上清,菌体用10%甘油重悬并洗涤。重复洗涤3次。
第三次离心后,弃绝大部分上清,留下约1ml 液体用于重悬菌体。
从制得得感受态细胞中,取200ul于灭菌EP管中,加入连接反应产物5ul,混匀,不要产生气泡,在冰上放置5min。
将混匀后得200ul菌液移入电击杯中。
使用电击穿孔仪进行转化,设置为电压 2500 V,时间 5 ms。
电击后,往电击杯中加入 800ul SOC培养基,冲洗出菌体,转移至灭菌1.5 ml EP管中。37℃,150 rpm ,轻摇45~60 min。
取全部均匀涂布于含 Zeocin 25 ug/ml 的LLB-Zeocin平板上,正放,待涂布液不在流动,37℃ 培养12~16小时。
线性化质粒DNA对Pichia pastorisGS115的转化
[编辑]取新鲜制备的(或-70℃冻存的)感受态细胞置于冰浴中,使其完全解冻;
- 将100μl菌体移出至一新的无菌Eppendorf管中,加入5-20μg线性化质粒(5~10μl),轻弹混匀,尽数吸出转移到0.2cm 型的电穿孔转化杯中;
- 转化杯置于冰浴中5~10分钟,保持低温。
- 电穿孔转化电击条件:电压:1500V;电阻:400Ω;电容:25μF;脉冲时间:10mS;一次电击。
- 电击后,马上在电击转化杯中加入1ml 4℃预冷的1M的山梨醇溶液,用微量移液枪吹打均匀,置于冰浴中;
- 取30℃烘至表面半干的MD培养基平板,在超净工作台上无菌操作涂布平板,400μl/板
毕赤酵母电转化方法
[编辑]菌体的准备
[编辑]- 挑取酵母单菌落,接种至含有5ml YPD培养基的50ml三角瓶中,30℃、250-300r/min培养过夜;
- 取100-500μl的培养物接种至含有500ml新鲜培养基的2L三角摇瓶中,28~30℃、250-300r/min培养过夜,至OD600达到1.3~1.5;
- 将细胞培养物于4℃,1500g离心5min,用500ml的冰预冷的无菌水将菌体沉淀重悬;
- 按步骤3离心,用250ml的冰预冷的无菌水将菌体沉淀重悬;
- 按步骤3离心,用20ml的冰预冷的1mol的山梨醇溶液将菌体沉淀重悬;
- 按步骤3离心,用1ml的冰预冷的1mol的山梨醇溶液将菌体沉淀重悬,其终体积约为1.5ml;
- 备注:可将其分装为80μl一份的包装冷冻起来,但会影响其转化效率(2周之内)。
电击转化
[编辑]- 将5~20μg的线性化DNA溶解在5~10μl TE溶液中,与80μl的上述步骤6所得的菌体混匀,转至0.2cm冰预冷的电转化杯中;
- 将电转化杯冰浴5min;
- 根据电转化仪提供的资料,参考其他文献及多次摸索,确定合适的电压、电流、电容等参数,按优化的参数,进行电击;
- 电击完毕后,加入1ml冰预冷的山梨醇溶液将菌体混匀,转至1.5ml的EP管中;
- 将菌体悬液涂布于MD或RDB平板上,每200~600μl涂布一块平板;
- 将平板置于30℃培养,直至单个菌落出现。
推荐:电压1.5kV;电容25μF;电阻200Ω。电击时间为4~10msec