細胞生物學/原代細胞培養和傳代培養的方法

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原代細胞培養方法[編輯]

原代培養原理[編輯]

將動物機體的各種組織從機體中取出,經各種酶(常用胰蛋白酶)、螯合劑(常用EDTA)或機械方法處理,分散成單細胞,置合適的培養基中培養,使細胞得以生存、生長和繁殖,這一過程稱原代培養。     

儀器、材料及試劑[編輯]

儀器:培養箱(調整至37℃),培養瓶、青黴素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、紗布、手術器械、血球計數板、離心機、水浴箱(37℃)

材料:動物組織塊

試劑:1640培養基(含20%小牛血清),0.25%胰酶,Hank′s液,碘酒

初代消化培養法[編輯]

1. 準備:取各種已消毒的培養用品置於淨化台面,紫外線消毒20分鐘。開始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。

2. 佈局:點燃酒精燈,安裝吸管帽。

3. 處理組織:把組織塊置於燒杯中,用Hanks液漂洗2~3次,去除血污;如懷疑組織可能污染,可先置於含有青鏈黴素的混合液中30~60分鐘。

4. 剪切:用眼科剪把組織切成2~3毫米大小的塊,以便於消化。加入比組織塊總量多30~50倍的胰蛋白酶液,然後一併倒入三角燒瓶中,結紮瓶口或塞以膠塞。

5. 消化:或用恆溫水浴,或置於37℃溫箱消化均可,消化中每隔20分鐘應搖動一次,如用電磁恆溫攪拌器消化更好。消化時間依組織塊的大小和組織的硬度而定。

6. 分離:在消化過程中見消化液發混濁時,可用吸管吸出少許消化液在鏡下觀察,如組織已分散成細胞團或單個細胞,立即終止消化,隨即通過適宜不鏽鋼篩,濾掉尚未充分消化開的組織塊。低速(500~1000轉/分)離心消化液5分鐘,吸出上清,加入適量含有血清的培養液。

7. 計數:用計數板計數,如細胞懸液細胞密度過大,再補加培養液調整後,分裝入培養瓶中。對大多數細胞來說,pH要求在7.2~7.4範圍,培養液呈微紅色,如顏色偏黃,說明液體變酸,可用NaHCO3調整。

8. 培養:置於36.5℃溫箱培養,如用CO2溫箱培養,瓶口需用紗布棉塞或螺旋帽堵塞,紗布塞易生黴菌,每次換液時需要換新塞。

初代組織塊培養法[編輯]

1. 剪切:把組織小塊置於小燒杯或青黴素小瓶中,用Hanks液漂洗二三次以去掉表面血污,吸靜Hanks液,用眼科剪反覆剪切1mm3塊為止。

2. 擺佈:用彎頭吸管吸取若干小塊,置於培養瓶中,用吸管彎頭把組織小塊擺佈在培養瓶底部,小塊相互距離以0.5cm為宜,每一25ml培養瓶底可擺佈20~30塊。

3. 輕輕翻轉培養瓶,另瓶底向上,注意翻瓶時勿另組織小塊流動,塞好瓶塞,置36.5℃溫箱培養2小時左右(勿超過4小時),使小塊微乾涸。

4. 培養:從微箱中取出培養瓶,開塞,46度斜持培養瓶,箱瓶底腳部輕輕注入培養液少許,然後緩緩再把培養瓶翻轉過來,讓培養液慢慢覆蓋附於瓶地上的組織小塊。置溫箱中靜止培養。待細胞從組織塊游出數量增多後。再補加培養液。

傳代培養法[編輯]

原理[編輯]

    細胞在培養瓶長成緻密單層後,已基本上飽和,為使細胞能繼續生長,同時

也將細胞數量擴大,就必須進行傳代(再培養)。 傳代培養也是一種將細胞種保存下去的方法。同時也是利用培養細胞進行各種實驗的必經過程。懸浮型細胞直接分瓶就可以,而貼壁細胞需經消化後才能分瓶。

材料和試劑[編輯]

1. 細胞:貼壁細胞株

2. 試劑:0.25%胰酶、1640培養基(含10%小牛血清)

3. 儀器和器材:倒置顯微鏡,培養箱、培養瓶、吸管、廢液缸等

操作步驟[編輯]

1. 吸除培養瓶內舊培養液。

2. 向瓶內加入胰蛋白酶和EDTA混合液少許,以能覆滿瓶底為限。

3. 置溫箱中2~5分鐘,當發現細胞質回縮,細胞間隙增大後,立即終止消化。

4. 吸除消化液,向瓶內注入Hanks液數毫升,輕輕轉動培養瓶,把殘餘消化液衝掉。注意加Hanks液沖洗細胞時,動作要輕,以免把已鬆動的細胞衝掉流失,如用胰蛋白酶液單獨消化,吸除胰蛋白酶液後,可不用Hanks液沖洗,直接加入培養液。

5. 用吸管吸取營養液輕輕反覆吹打瓶壁細胞,使之從瓶壁脫離形成細胞懸液。

6. 計數板計數後,把細胞懸液分成等份分裝入數個培養瓶中,置溫箱中培養。

無菌操作注意事項[編輯]

1. 操作前要洗手,進入超淨台後手要用75%酒精或0.2%新潔爾滅擦試。試劑等瓶口也要擦試。

2. 點燃酒精燈,操作在火焰附近進行,耐熱物品要經常在火焰上燒灼,金屬器械燒灼時間不能太長,以免退火,並冷卻後才能夾取組織,吸取過營養液的用具不能再燒灼,以免燒焦形成碳膜。

3. 操作動作要準確敏捷,但又不能太快,以防空氣流動,增加污染機會。

4. 不能用手觸已消毒器皿的工作部分,工作枱面上用品要佈局合理。

5. 瓶子開口後要儘量保持45℃斜位。

6. 吸溶液的吸管等不能混用。