原代細胞培養方法

將動物機體的各種組織從機體中取出，經各種酶（常用胰蛋白酶）、螯合劑（常用EDTA）或機械方法處理，分散成單細胞，置合適的培養基中培養，使細胞得以生存、生長和繁殖，這一過程稱原代培養。

儀器：培養箱（調整至37℃），培養瓶、青黴素瓶、小玻璃漏斗、平皿、吸管、移液管、紗布、手術器械、血球計數板、離心機、水浴箱（37℃）

材料：動物組織塊

試劑：1640培養基（含20%小牛血清），0.25%胰酶，Hank′s液，碘酒

1. 準備：取各種已消毒的培養用品置於淨化台面，紫外線消毒20分鐘。開始工作前先洗手、75%酒精擦拭手至肘部。

2. 布局：點燃酒精燈，安裝吸管帽。

3. 處理組織：把組織塊置於燒杯中，用Hanks液漂洗2~3次，去除血污；如懷疑組織可能污染，可先置於含有青鏈黴素的混合液中30~60分鐘。

4. 剪切：用眼科剪把組織切成2~3毫米大小的塊，以便於消化。加入比組織塊總量多30~50倍的胰蛋白酶液，然後一併倒入三角燒瓶中，結紮瓶口或塞以膠塞。

5. 消化：或用恆溫水浴，或置於37℃溫箱消化均可，消化中每隔20分鐘應搖動一次，如用電磁恆溫攪拌器消化更好。消化時間依組織塊的大小和組織的硬度而定。

6. 分離：在消化過程中見消化液發混濁時，可用吸管吸出少許消化液在鏡下觀察，如組織已分散成細胞團或單個細胞，立即終止消化，隨即通過適宜不鏽鋼篩，濾掉尚未充分消化開的組織塊。低速（500~1000轉/分）離心消化液5分鐘，吸出上清，加入適量含有血清的培養液。

7. 計數：用計數板計數，如細胞懸液細胞密度過大，再補加培養液調整後，分裝入培養瓶中。對大多數細胞來說，pH要求在7.2~7.4範圍，培養液呈微紅色，如顏色偏黃，說明液體變酸，可用NaHCO3調整。

8. 培養：置於36.5℃溫箱培養，如用CO2溫箱培養，瓶口需用紗布棉塞或螺旋帽堵塞，紗布塞易生黴菌，每次換液時需要換新塞。

1. 剪切：把組織小塊置於小燒杯或青黴素小瓶中，用Hanks液漂洗二三次以去掉表面血污，吸靜Hanks液，用眼科剪反覆剪切1mm3塊為止。

2. 擺布：用彎頭吸管吸取若干小塊，置於培養瓶中，用吸管彎頭把組織小塊擺布在培養瓶底部，小塊相互距離以0.5cm為宜，每一25ml培養瓶底可擺布20~30塊。

3. 輕輕翻轉培養瓶，另瓶底向上，注意翻瓶時勿另組織小塊流動，塞好瓶塞，置36.5℃溫箱培養2小時左右（勿超過4小時），使小塊微乾涸。

4. 培養：從微箱中取出培養瓶，開塞，46度斜持培養瓶，箱瓶底腳部輕輕注入培養液少許，然後緩緩再把培養瓶翻轉過來，讓培養液慢慢覆蓋附於瓶地上的組織小塊。置溫箱中靜止培養。待細胞從組織塊游出數量增多後。再補加培養液。

傳代培養法

細胞在培養瓶長成緻密單層後，已基本上飽和，為使細胞能繼續生長，同時

也將細胞數量擴大，就必須進行傳代（再培養）。傳代培養也是一種將細胞種保存下去的方法。同時也是利用培養細胞進行各種實驗的必經過程。懸浮型細胞直接分瓶就可以，而貼壁細胞需經消化後才能分瓶。

1. 細胞：貼壁細胞株

2. 試劑：0.25％胰酶、1640培養基（含10％小牛血清）

3. 儀器和器材：倒置顯微鏡，培養箱、培養瓶、吸管、廢液缸等

1. 吸除培養瓶內舊培養液。

2. 向瓶內加入胰蛋白酶和EDTA混合液少許，以能覆滿瓶底為限。

3. 置溫箱中2~5分鐘，當發現細胞質回縮，細胞間隙增大後，立即終止消化。

4. 吸除消化液，向瓶內注入Hanks液數毫升，輕輕轉動培養瓶，把殘餘消化液衝掉。注意加Hanks液沖洗細胞時，動作要輕，以免把已鬆動的細胞衝掉流失，如用胰蛋白酶液單獨消化，吸除胰蛋白酶液後，可不用Hanks液沖洗，直接加入培養液。

5. 用吸管吸取營養液輕輕反覆吹打瓶壁細胞，使之從瓶壁脫離形成細胞懸液。

6. 計數板計數後，把細胞懸液分成等份分裝入數個培養瓶中，置溫箱中培養。

1. 操作前要洗手，進入超淨台後手要用75%酒精或0.2%新潔爾滅擦試。試劑等瓶口也要擦試。

2. 點燃酒精燈，操作在火焰附近進行，耐熱物品要經常在火焰上燒灼，金屬器械燒灼時間不能太長，以免退火，並冷卻後才能夾取組織，吸取過營養液的用具不能再燒灼，以免燒焦形成碳膜。

3. 操作動作要準確敏捷，但又不能太快，以防空氣流動，增加污染機會。

4. 不能用手觸已消毒器皿的工作部分，工作檯面上用品要布局合理。

5. 瓶子開口後要儘量保持45℃斜位。

6. 吸溶液的吸管等不能混用。